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I型鴨肝炎病毒和鴨瘟病毒一步法PCR檢測方法與流程

文檔序號(hào):11126322閱讀:500來源:國知局
I型鴨肝炎病毒和鴨瘟病毒一步法PCR檢測方法與制造工藝

本發(fā)明屬于分子生物學(xué)技術(shù)領(lǐng)域,特別涉及一種I型鴨肝炎病毒和鴨瘟病毒一步法PCR檢測方法。



背景技術(shù):

鴨病毒性肝炎是由鴨肝炎病毒(DHV)引起的一種在雛鴨間傳播迅速和高度致死性的傳染病,主要特征為肝臟腫大,有出血斑點(diǎn)和神經(jīng)癥狀,在新疫區(qū),本病致死率很高,可達(dá)90%以上。鴨肝炎病毒I型屬于小RNA病毒科,呈球形或類球形,直徑在20-40NM,無囊膜,無血凝性,可在鴨、雞、鵝胚尿囊腔增殖。病毒抵抗力強(qiáng),在自然環(huán)境中可較長時(shí)間存活。DHV病毒II型屬于星狀病毒,DHV病毒III型屬于小RNA病毒。DVH病毒三種血清型之間無交叉保護(hù)作用。目前在我國鴨肝炎病毒I型是主要的流行血清型。

鴨瘟又名鴨病毒性腸炎,是鴨、鵝和其他雁形目禽類的一種急性、熱性、敗血性傳染病。該病可引起7日齡以上的雛鴨發(fā)病。該病的特征是流行廣泛,傳播迅速,發(fā)病率和死亡率極高。引起鴨瘟的病原體鴨瘟病毒(DPV)屬于皰疹病毒科(Herpesviridae)皰疹病毒屬(Herpesvirus)中的濾過性的病毒,病毒粒子呈球形,直徑為120~180nm,有囊膜,病毒核酸型為DNA。病毒在病鴨體內(nèi)分散于各種內(nèi)臟器官、血液、分泌物和排泄物中,其中以肝、肺、腦含毒量最高。本病毒對(duì)禽類和哺乳動(dòng)物的紅細(xì)胞沒有凝集現(xiàn)象,毒株間在毒力上有差異,但免疫原性相似。

I型鴨肝炎病毒和鴨瘟病毒是危害養(yǎng)鴨業(yè)的兩種重要病原,引起雛鴨混合感染,導(dǎo)致大批雛鴨染病死亡,造成嚴(yán)重的損失。目前對(duì)這兩種病毒通常需要分別進(jìn)行檢測,費(fèi)時(shí)費(fèi)力,成本較高。多重PCR(multiplex PCR)又稱多重引物PCR或復(fù)合PCR,是在同一PCR反應(yīng)體系里加上二對(duì)以上引物,同時(shí)擴(kuò)增出多個(gè)核酸片段的PCR反應(yīng),可用于同時(shí)鑒定多種微生物。授權(quán)公告號(hào)為CN104450939B的發(fā)明專利公開了一種粉大蕉枯萎病菌的二重PCR分子快速檢測方法,可同時(shí)對(duì)粉蕉枯萎病和大蕉枯萎病的病菌進(jìn)行檢測。靈敏度高、方便快捷、省時(shí)省力。因此,如果能開發(fā)出一種同時(shí)檢測I型鴨肝炎病毒和鴨瘟病毒的方法,將會(huì)大大節(jié)約人力和時(shí)間成本。



技術(shù)實(shí)現(xiàn)要素:

為了解決上述技術(shù)問題,本發(fā)明提供了一種I型鴨肝炎病毒和鴨瘟病毒一步法PCR檢測方法。

本發(fā)明具體技術(shù)方案如下:

本發(fā)明提供了一種I型鴨肝炎病毒和鴨瘟病毒一步法PCR檢測方法,包括如下步驟:

(1)選取I型鴨肝炎病毒中高度保守的基因?yàn)槟繕?biāo)片段I,設(shè)計(jì)并合成相應(yīng)的特異性引物對(duì)I,所述特異性引物對(duì)I的序列如下:

上游引物P1:5'AGCTTAAGGCCCGGTGCCCCGTTCT 3'(如SEQ ID NO.1所示);

下游引物P2:5'GGTAGGGTAGGGAATAGTAAAGTAA 3'(如SEQ ID NO.2所示);

(2)選取鴨瘟病毒中高度保守的基因?yàn)槟繕?biāo)片段Ⅱ,設(shè)計(jì)并合成相應(yīng)的特異性引物對(duì)Ⅱ,所述特異性引物對(duì)Ⅱ的序列如下:

上游引物P3:5'TGGGAAGGCTTTCGGTCGC 3'(如SEQ ID NO.3所示);

下游引物P4:5'CATTCGCGCCTTTGCTAAATTCTCT 3'(如SEQ ID NO.4所示);

(3)分別對(duì)I型鴨肝炎病毒的基因組RNA和鴨瘟病毒的基因組DNA進(jìn)行提取;

(4)將步驟(3)中得到的DNA和RNA混合作為模板,聯(lián)合使用特異性引物I和特異性引物Ⅱ進(jìn)行二重PCR擴(kuò)增;

(5)用瓊脂糖凝膠電泳對(duì)步驟(4)中得到的二重PCR產(chǎn)物進(jìn)行分析。

上述方法可以同時(shí)對(duì)DNA病毒(鴨瘟病毒)和RNA病毒(I型鴨肝炎病毒)進(jìn)行擴(kuò)增和檢測,從一套實(shí)驗(yàn)中同時(shí)得到兩份結(jié)果,大大減少分別檢測所花費(fèi)的時(shí)間和人力成本;特異性引物對(duì)I和特異性引物對(duì)Ⅱ均具有良好的特異性,能夠擴(kuò)增出高度特異的片段,并且雜質(zhì)極少,也為后續(xù)的鑒定操作提供了便利。

進(jìn)一步地,所述二重PCR的反應(yīng)體系中包括如下組分:

I型鴨肝炎病毒基因組RNA≥2.65ng/mL、鴨瘟病毒基因組DNA≥1.35ng/mL、特異性引物對(duì)I0.15~0.4μM、特異性引物對(duì)Ⅱ0.15~0.4μM、dNTP 0.4mM、M-MLV 1U/μL、RNA酶抑制劑2U/μL、DNA聚合酶0.05U/μL以及體積份數(shù)為10~30%的10×PCR反應(yīng)液。

進(jìn)一步地,所述反應(yīng)體系中所述特異性引物對(duì)I和所述特異性引物對(duì)Ⅱ的濃度均為0.35μM。

進(jìn)一步地,所述反應(yīng)體系中所述I型鴨肝炎病毒基因組RNA的濃度為2.65*10-3~2.65μg/mL,所述鴨瘟病毒基因組DNA的濃度為1.35*10-3~1.35μg/mL。

進(jìn)一步地,所述二重PCR的反應(yīng)條件如下:

45℃保持30min,94℃保持2min;94℃變性1min,54~60℃退火1min,72℃延伸40s,共40個(gè)循環(huán);循環(huán)結(jié)束后72℃延伸10min,最后4℃終止反應(yīng)。

上述反應(yīng)體系和反應(yīng)條件均經(jīng)過優(yōu)化,使用其對(duì)I型鴨肝炎病毒和鴨瘟病毒同時(shí)進(jìn)行PCR擴(kuò)增,可以在同一條件下、一次實(shí)驗(yàn)中同時(shí)獲得兩種獲得產(chǎn)量較高、特異性好、純度高的產(chǎn)物,操作簡單、省時(shí)省力;RNA酶抑制劑可以抑制環(huán)境中存在的微量RNA酶的活性,防止模板RNA被降解,有助于后續(xù)實(shí)驗(yàn)的順利進(jìn)行。

進(jìn)一步地,所述目的片段I的長度為399bp,所述目的片段Ⅱ的長度為232bp。

本發(fā)明的有益效果是:本發(fā)明提供的I型鴨肝炎病毒和鴨瘟病毒一步法PCR檢測方法操作簡單、省時(shí)省力,可以在同一個(gè)反應(yīng)體系中進(jìn)行PCR和RT-PCR,同時(shí)對(duì)DNA病毒(鴨瘟病毒)和RNA病毒(I型鴨肝炎病毒)進(jìn)行擴(kuò)增和檢測,從一套實(shí)驗(yàn)中同時(shí)得到兩份結(jié)果,大大減少分別檢測所花費(fèi)的時(shí)間和人力成本;根據(jù)I型鴨肝炎病毒RNA和鴨瘟病毒DNA的保守序列設(shè)計(jì)的特異性引物對(duì)I和特異性引物對(duì)Ⅱ均具有良好的特異性,能夠擴(kuò)增出高度特異的片段,并且產(chǎn)物雜質(zhì)極少,適合推廣使用。

附圖說明

圖1為不同引物用量的二重PCR擴(kuò)增電泳圖;

其中:M:DL2000DNA Marker;1:0.3μL;2:0.4μL;3:0.5μL;4:0.6μL;5:0.7μL;6:0.8μL;

圖2為不同退火溫度的二重PCR擴(kuò)增電泳圖;

其中:M:DL2000DNA Marker;1:54℃;2:55℃;3:56℃;4:57℃;5:58℃;6:59℃;7:60℃;

圖3為不同模板濃度的二重PCR擴(kuò)增電泳圖;

其中:M:DL2000DNA Marker;1:2.65μg/mL DHV+1.35μg/mL DEV;2:0.265μg/mL DHV+0.135μg/mL DEV;3:26.5ng/mL DHV+13.5ng/mL DEV;4:2.65ng/mL DHV+1.35ng/mL DEV;5:0.265ng/mL DHV+0.135ng/mL DEV;6:26.5pg/mL DHV+13.5pg/mL;

圖4為不同病毒種類的二重PCR擴(kuò)增電泳圖;

其中:M:DL2000DNA Marker;1.DHV+DEV;2.DHV;3.DEV;4.AIV;5.ARV;6.AEV;7.EDSV;8.GPV;9.MDPV;10.NDV;11.DTMUV。

具體實(shí)施方式

實(shí)施例1

一種I型鴨肝炎病毒和鴨瘟病毒一步法PCR檢測方法,包括如下步驟:

(1)選取I型鴨肝炎病毒中高度保守的基因?yàn)槟繕?biāo)片段I,設(shè)計(jì)并合成相應(yīng)的特異性引物對(duì)I,所述特異性引物對(duì)I的序列如下:

上游引物P1:5'AGCTTAAGGCCCGGTGCCCCGTTCT 3';

下游引物P2:5'GGTAGGGTAGGGAATAGTAAAGTAA 3';

(2)選取鴨瘟病毒中高度保守的基因?yàn)槟繕?biāo)片段Ⅱ,設(shè)計(jì)并合成相應(yīng)的特異性引物對(duì)Ⅱ,所述特異性引物對(duì)Ⅱ的序列如下:

上游引物P3:5'TGGGAAGGCTTTCGGTCGC 3';

下游引物P4:5'CATTCGCGCCTTTGCTAAATTCTCT 3';

(3)分別對(duì)I型鴨肝炎病毒的基因組RNA和鴨瘟病毒的基因組DNA進(jìn)行提?。?/p>

(4)將步驟(3)中得到的DNA和RNA混合作為模板,聯(lián)合使用特異性引物I和特異性引物Ⅱ進(jìn)行二重PCR擴(kuò)增;

(5)用瓊脂糖凝膠電泳對(duì)步驟(4)中得到的二重PCR產(chǎn)物進(jìn)行分析。

實(shí)施例2

一種I型鴨肝炎病毒和鴨瘟病毒一步法PCR檢測方法,包括實(shí)施例2所述的各步驟,其中二重PCR的反應(yīng)體系和反應(yīng)條件如下:

反應(yīng)體系:I型鴨肝炎病毒基因組RNA 1.0μL(2.65μg/mL)、鴨瘟病毒基因組DNA 1.0μL(1.35μg/mL)、10μmol/L的特異性引物對(duì)I和特異性引物對(duì)Ⅱ各0.3μL、2×PCR緩沖液6.0μL、10mmol/L的dNTP 4.0μL、200U的PCR聚合酶1.0μL、200U的反轉(zhuǎn)錄酶1.0μL、40U/μL的RNA酶抑制劑0.5μL,用ddH2O水補(bǔ)足至20μL。

反應(yīng)條件:45℃保持30min,94℃保持2min;94℃變性1min,58℃退火1min,72℃延伸40s,共40個(gè)循環(huán);循環(huán)結(jié)束后72℃延伸10min,最后4℃終止反應(yīng)。

實(shí)施例3

一種I型鴨肝炎病毒和鴨瘟病毒一步法PCR檢測方法,包括實(shí)施例3所述的各步驟,其中二重PCR的反應(yīng)體系和反應(yīng)條件如下:

反應(yīng)體系:I型鴨肝炎病毒基因組RNA 1.0μL(0.265μg/mL)、鴨瘟病毒基因組DNA 1.0μL(0.135μg/mL)、10μmol/L的特異性引物對(duì)I和特異性引物對(duì)Ⅱ各0.4μL、10×PCR緩沖液6.0μL、0.4mM的dNTP 4.0μL、200U的PCR聚合酶1.0μL、M-MLV 1U、RNA酶抑制劑1U,用ddH2O水補(bǔ)足至20μL。

反應(yīng)條件:45℃保持30min,94℃保持2min;94℃變性1min,58℃退火1min,72℃延伸40s,共40個(gè)循環(huán);循環(huán)結(jié)束后72℃延伸10min,最后4℃終止反應(yīng)。

實(shí)施例4

一種I型鴨肝炎病毒和鴨瘟病毒一步法PCR檢測方法,包括實(shí)施例2所述的各步驟,其中二重PCR的反應(yīng)體系和反應(yīng)條件如下:

反應(yīng)體系:I型鴨肝炎病毒基因組RNA 1.0μL(26.5ng/mL)、鴨瘟病毒基因組DNA 1.0μL(13.5ng/mL)、10μmol/L的特異性引物對(duì)I和特異性引物對(duì)Ⅱ各0.5μL、10×PCR緩沖液2.0μL、0.4mM的dNTP 4.0μL、200U的PCR聚合酶1.0μL、M-MLV 1U、RNA酶抑制劑1U,,用ddH2O水補(bǔ)足至20μL。

反應(yīng)條件:45℃保持30min,94℃保持2min;94℃變性1min,58℃退火1min,72℃延伸40s,共40個(gè)循環(huán);循環(huán)結(jié)束后72℃延伸10min,最后4℃終止反應(yīng)。

實(shí)施例5

一種I型鴨肝炎病毒和鴨瘟病毒一步法PCR檢測方法,包括實(shí)施例3所述的各步驟,其中二重PCR的反應(yīng)體系和反應(yīng)條件如下:

反應(yīng)體系:I型鴨肝炎病毒基因組RNA 1.0μL(2.65ng/mL)、鴨瘟病毒基因組DNA 1.0μL(1.35ng/mL)、10μmol/L的特異性引物對(duì)I和特異性引物對(duì)Ⅱ各0.6μL、10×PCR緩沖液6.0μL、0.4mM的dNTP 4.0μL、200U的PCR聚合酶1.0μL、M-MLV 1U、RNA酶抑制劑1U,,用ddH2O水補(bǔ)足至20μL。

反應(yīng)條件:45℃保持30min,94℃保持2min;94℃變性1min,58℃退火1min,72℃延伸40s,共40個(gè)循環(huán);循環(huán)結(jié)束后72℃延伸10min,最后4℃終止反應(yīng)。

實(shí)施例6

一種I型鴨肝炎病毒和鴨瘟病毒一步法PCR檢測方法,包括實(shí)施例2所述的各步驟,其中二重PCR的反應(yīng)體系和反應(yīng)條件如下:

反應(yīng)體系:I型鴨肝炎病毒基因組RNA 1.0μL(2.65μg/mL)、鴨瘟病毒基因組DNA 1.0μL(1.35μg/mL)、10μmol/L的特異性引物對(duì)I和特異性引物對(duì)Ⅱ各0.7μL、10×PCR緩沖液2.0μL、0.4mM的dNTP 4.0μL、200U的PCR聚合酶1.0μL、M-MLV 1U、RNA酶抑制劑1U,,用ddH2O水補(bǔ)足至20μL。

反應(yīng)條件:45℃保持30min,94℃保持2min;94℃變性1min,58℃退火1min,72℃延伸40s,共40個(gè)循環(huán);循環(huán)結(jié)束后72℃延伸10min,最后4℃終止反應(yīng)。

實(shí)施例7

一種I型鴨肝炎病毒和鴨瘟病毒一步法PCR檢測方法,包括實(shí)施例3所述的各步驟,其中二重PCR的反應(yīng)體系和反應(yīng)條件如下:

反應(yīng)體系:I型鴨肝炎病毒基因組RNA 1.0μL(0.265μg/mL)、鴨瘟病毒基因組DNA 1.0μL(0.135μg/mL)、10μmol/L的特異性引物對(duì)I和特異性引物對(duì)Ⅱ各0.8μL、10×PCR緩沖液6.0μL、0.4mM的dNTP 4.0μL、200U的PCR聚合酶1.0μL、M-MLV 1U、RNA酶抑制劑1U,,用ddH2O水補(bǔ)足至20μL。

反應(yīng)條件:45℃保持30min,94℃保持2min;94℃變性1min,58℃退火1min,72℃延伸40s,共40個(gè)循環(huán);循環(huán)結(jié)束后72℃延伸10min,最后4℃終止反應(yīng)。

實(shí)施例8

一種I型鴨肝炎病毒和鴨瘟病毒一步法PCR檢測方法,包括實(shí)施例2所述的各步驟,其中二重PCR的反應(yīng)體系和反應(yīng)條件如下:

反應(yīng)體系:I型鴨肝炎病毒基因組RNA 1.0μL(2.65μg/mL)、鴨瘟病毒基因組DNA 1.0μL(1.35μg/mL)、10μmol/L的特異性引物對(duì)I和特異性引物對(duì)Ⅱ各0.7μL、10×PCR緩沖液2.0μL、0.4mM的dNTP 4.0μL、200U的PCR聚合酶1.0μL、M-MLV 1U、RNA酶抑制劑1U,,用ddH2O水補(bǔ)足至20μL。

反應(yīng)條件:45℃保持30min,94℃保持2min;94℃變性1min,54℃退火1min,72℃延伸40s,共40個(gè)循環(huán);循環(huán)結(jié)束后72℃延伸10min,最后4℃終止反應(yīng)。

實(shí)施例9

一種I型鴨肝炎病毒和鴨瘟病毒一步法PCR檢測方法,包括實(shí)施例3所述的各步驟,其中二重PCR的反應(yīng)體系和反應(yīng)條件如下:

反應(yīng)體系:I型鴨肝炎病毒基因組RNA 1.0μL(2.65μg/mL)、鴨瘟病毒基因組DNA 1.0μL(1.35μg/mL)、10μmol/L的特異性引物對(duì)I和特異性引物對(duì)Ⅱ各0.7μL、10×PCR緩沖液6.0μL、0.4mM的dNTP 4.0μL、200U的PCR聚合酶1.0μL、M-MLV 1U、RNA酶抑制劑1U,,用ddH2O水補(bǔ)足至20μL。

反應(yīng)條件:45℃保持30min,94℃保持2min;94℃變性1min,55℃退火1min,72℃延伸40s,共40個(gè)循環(huán);循環(huán)結(jié)束后72℃延伸10min,最后4℃終止反應(yīng)。

實(shí)施例10

一種I型鴨肝炎病毒和鴨瘟病毒一步法PCR檢測方法,包括實(shí)施例3所述的各步驟,其中二重PCR的反應(yīng)體系和反應(yīng)條件如下:

反應(yīng)體系:I型鴨肝炎病毒基因組RNA 1.0μL(2.65μg/mL)、鴨瘟病毒基因組DNA 1.0μL(1.35μg/mL)、10μmol/L的特異性引物對(duì)I和特異性引物對(duì)Ⅱ各0.7μL、10×PCR緩沖液2.0μL、0.4mM的dNTP 4.0μL、200U的PCR聚合酶1.0μL、M-MLV 1U、RNA酶抑制劑1U,,用ddH2O水補(bǔ)足至20μL。

反應(yīng)條件:45℃保持30min,94℃保持2min;94℃變性1min,56℃退火1min,72℃延伸40s,共40個(gè)循環(huán);循環(huán)結(jié)束后72℃延伸10min,最后4℃終止反應(yīng)。

實(shí)施例11

一種I型鴨肝炎病毒和鴨瘟病毒一步法PCR檢測方法,包括實(shí)施例2所述的各步驟,其中二重PCR的反應(yīng)體系和反應(yīng)條件如下:

反應(yīng)體系:I型鴨肝炎病毒基因組RNA 1.0μL(2.65μg/mL)、鴨瘟病毒基因組DNA 1.0μL(1.35μg/mL)、10μmol/L的特異性引物對(duì)I和特異性引物對(duì)Ⅱ各0.7μL、10×PCR緩沖液6.0μL、0.4mM的dNTP 4.0μL、200U的PCR聚合酶1.0μL、M-MLV 1U、RNA酶抑制劑1U,,用ddH2O水補(bǔ)足至20μL。

反應(yīng)條件:45℃保持30min,94℃保持2min;94℃變性1min,57℃退火1min,72℃延伸40s,共40個(gè)循環(huán);循環(huán)結(jié)束后72℃延伸10min,最后4℃終止反應(yīng)。

實(shí)施例12

一種I型鴨肝炎病毒和鴨瘟病毒一步法PCR檢測方法,包括實(shí)施例3所述的各步驟,其中二重PCR的反應(yīng)體系和反應(yīng)條件如下:

反應(yīng)體系:I型鴨肝炎病毒基因組RNA 1.0μL(2.65μg/mL)、鴨瘟病毒基因組DNA 1.0μL(1.35μg/mL)、10μmol/L的特異性引物對(duì)I和特異性引物對(duì)Ⅱ各0.7μL、10×PCR緩沖液2.0μL、0.4mM的dNTP 4.0μL、200U的PCR聚合酶1.0μL、M-MLV 1U、RNA酶抑制劑1U,,用ddH2O水補(bǔ)足至20μL。

反應(yīng)條件:45℃保持30min,94℃保持2min;94℃變性1min,58℃退火1min,72℃延伸40s,共40個(gè)循環(huán);循環(huán)結(jié)束后72℃延伸10min,最后4℃終止反應(yīng)。

實(shí)施例13

一種I型鴨肝炎病毒和鴨瘟病毒一步法PCR檢測方法,包括實(shí)施例2所述的各步驟,其中二重PCR的反應(yīng)體系和反應(yīng)條件如下:

反應(yīng)體系:I型鴨肝炎病毒基因組RNA 1.0μL(2.65μg/mL)、鴨瘟病毒基因組DNA 1.0μL(1.35μg/mL)、10μmol/L的特異性引物對(duì)I和特異性引物對(duì)Ⅱ各0.7μL、10×PCR緩沖液6.0μL、0.4mM的dNTP 4.0μL、200U的PCR聚合酶1.0μL、M-MLV 1U、RNA酶抑制劑1U,,用ddH2O水補(bǔ)足至20μL。

反應(yīng)條件:45℃保持30min,94℃保持2min;94℃變性1min,59℃退火1min,72℃延伸40s,共40個(gè)循環(huán);循環(huán)結(jié)束后72℃延伸10min,最后4℃終止反應(yīng)。

實(shí)施例14

一種I型鴨肝炎病毒和鴨瘟病毒一步法PCR檢測方法,包括實(shí)施例3所述的各步驟,其中二重PCR的反應(yīng)體系和反應(yīng)條件如下:

反應(yīng)體系:I型鴨肝炎病毒基因組RNA 1.0μL(2.65μg/mL)、鴨瘟病毒基因組DNA 1.0μL(1.35μg/mL)、10μmol/L的特異性引物對(duì)I和特異性引物對(duì)Ⅱ各0.7μL、10×PCR緩沖液2.0μL、0.4mM的dNTP 4.0μL、200U的PCR聚合酶1.0μL、M-MLV 1U、RNA酶抑制劑1U,,用ddH2O水補(bǔ)足至20μL。

反應(yīng)條件:45℃保持30min,94℃保持2min;94℃變性1min,60℃退火1min,72℃延伸40s,共40個(gè)循環(huán);循環(huán)結(jié)束后72℃延伸10min,最后4℃終止反應(yīng)。

對(duì)照例1

對(duì)I型鴨肝炎病毒和鴨瘟病毒進(jìn)行二重PCR擴(kuò)增,采用的模板濃度為I型鴨肝炎病毒RNA0.265ng/ml、鴨瘟病毒DNA0.135ng/ml,反應(yīng)體系和反應(yīng)條件同實(shí)施例14。

對(duì)照例2

對(duì)I型鴨肝炎病毒和鴨瘟病毒進(jìn)行二重PCR擴(kuò)增,采用的模板濃度為I型鴨肝炎病毒RNA26.5pg/ml、鴨瘟病毒DNA13.5pg/ml,反應(yīng)體系和反應(yīng)條件同實(shí)施例14。

對(duì)照例3

以I型鴨肝炎病毒(DHV)的基因組RNA為模板,采用實(shí)施例14所述的PCR方法進(jìn)行PCR擴(kuò)增。

對(duì)照例4

以鴨瘟病毒(DEV)的基因組DNA為模板,采用實(shí)施例14所述的PCR方法進(jìn)行PCR擴(kuò)增。

對(duì)照例5

以禽流感病毒(AIV)的基因組RNA為模板,采用實(shí)施例14所述的PCR方法進(jìn)行PCR擴(kuò)增。

對(duì)照例6

以鴨黃病毒(ARV)的基因組RNA為模板,采用實(shí)施例14所述的PCR方法進(jìn)行PCR擴(kuò)增。

對(duì)照例7

以禽傳染性腦脊髓炎病毒(AEV)的基因組RNA為模板,采用實(shí)施例14所述的PCR方法進(jìn)行PCR擴(kuò)增。

對(duì)照例8

以減蛋綜合征病毒(DESV)的基因組DNA為模板,采用實(shí)施例14所述的PCR方法進(jìn)行PCR擴(kuò)增。

對(duì)照例9

以小鵝瘟病毒(GPV)的基因組DNA為模板,采用實(shí)施例14所述的PCR方法進(jìn)行PCR擴(kuò)增。

對(duì)照例10

以番鴨細(xì)小病毒(MDPV)的基因組DNA為模板,采用實(shí)施例14所述的PCR方法進(jìn)行PCR擴(kuò)增。

對(duì)照例11

以新城疫病毒(DESV)的基因組RNA為模板,采用實(shí)施例14所述的PCR方法進(jìn)行PCR擴(kuò)增。

對(duì)照例12

以鴨坦布蘇病毒(DESV)的基因組RNA為模板,采用實(shí)施例14所述的PCR方法進(jìn)行PCR擴(kuò)增。

實(shí)驗(yàn)例1

二重PCR反應(yīng)條件的優(yōu)化

(1)最適引物用量的確定

以實(shí)施例2~7為實(shí)驗(yàn)例1~6,分別按照所述反應(yīng)體系和反應(yīng)條件進(jìn)行二重PCR擴(kuò)增,PCR產(chǎn)物用1%瓊脂糖凝膠進(jìn)行電泳并用紫外燈掃描拍照,比較各條帶的清晰度和寬度。

如圖1所示,當(dāng)退火溫度控制在58℃時(shí),10μmol/L的引物用量在0.3~0.8μL范圍內(nèi)均可以獲得明亮、清晰的條帶、達(dá)到較好的PCR效果,其中引物用量達(dá)到0.7μL時(shí),兩條條帶的清晰度和亮度均達(dá)到最適效果。因此,反應(yīng)體系中引物的最適用量為0.7μL,即引物的最適濃度為0.35μM。

(2)最適退火溫度的確定

以實(shí)施例8~14為實(shí)驗(yàn)例1~7,分別按照所述反應(yīng)體系和反應(yīng)條件進(jìn)行二重PCR擴(kuò)增,PCR產(chǎn)物用1%瓊脂糖凝膠進(jìn)行電泳并用紫外燈掃描拍照,比較各條帶的清晰度和寬度。

如圖2所示,當(dāng)10μmol/L的引物用量控制在0.7μL、退火溫度在54~60℃時(shí)范圍內(nèi)梯度變化時(shí),均可以獲得明亮、清晰的條帶、達(dá)到較好的PCR效果,其中引物用量退火溫度達(dá)到58℃時(shí),兩條條帶的清晰度和亮度均達(dá)到最佳效果。因此,反應(yīng)條件中最適的退火溫度為58℃。

實(shí)驗(yàn)例2

敏感性試驗(yàn)

以實(shí)施例2~5中得到的PCR產(chǎn)物為實(shí)驗(yàn)組2~5,以對(duì)照例1~2中得到的PCR產(chǎn)物為對(duì)照組1~2,用1.5%瓊脂糖凝膠進(jìn)行電泳,電泳電壓120V、時(shí)間20min,比較條帶情況。

如圖3所示,經(jīng)過二重PCR后能擴(kuò)增出肉眼可見的條帶的最低濃度為2.65ng/mL和1.35ng/mL,低于該濃度則無法擴(kuò)增。因此,該二重PCR方法最低能檢測2.65ng/mL的I型鴨肝炎病毒RNA和1.35ng/mL的鴨瘟病毒DNA。

實(shí)驗(yàn)例3

特異性試驗(yàn)

以實(shí)施例12中得到的擴(kuò)增產(chǎn)物為實(shí)驗(yàn)例1,分別以對(duì)照例3~12中得到的擴(kuò)增產(chǎn)物作為對(duì)照組1~10,用1.5%瓊脂糖凝膠進(jìn)行電泳,電泳電壓120V、時(shí)間20min,比較條帶情況。

如圖4所示,DHV擴(kuò)增條帶為399bp,DEV擴(kuò)增條帶為232bp,均與實(shí)施例14中的擴(kuò)增條帶大小相符;而AIV,ARV,REV,EDSV,GPV,MDPV,NDV,DTMUV病毒均未擴(kuò)增出條帶。這表明該二重PCR擴(kuò)增方法具有高度特異性。

實(shí)驗(yàn)例4

臨床試驗(yàn)

從江蘇徐州地區(qū)的鴨群中隨機(jī)抽取166份肛拭子,依照實(shí)施例20提供的檢測方法對(duì)樣品中的I型鴨肝炎病毒和鴨瘟病毒同時(shí)進(jìn)行檢測。結(jié)果顯示,檢出I型鴨肝炎病毒2份,陽性率為1.2%;鴨瘟病毒43份,陽性率為26%;未檢測出其他常見病毒。

以上所述實(shí)施例僅表達(dá)了本發(fā)明的幾種實(shí)施方式,其描述較為具體和詳細(xì),但并不能因此而理解為對(duì)本發(fā)明專利范圍的限制。應(yīng)當(dāng)指出的是,對(duì)于本領(lǐng)域的普通技術(shù)人員來說,在不脫離本發(fā)明構(gòu)思的前提下,還可以做出若干變形和改進(jìn),這些都屬于本發(fā)明的保護(hù)范圍。因此,本發(fā)明專利的保護(hù)范圍應(yīng)以所附權(quán)利要求為準(zhǔn)。

序列表

<110> 中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院哈爾濱獸醫(yī)研究所

<120> 鴨肝炎病毒和鴨瘟病毒一步法PCR檢測方法

<160> 4

<170> PatentIn version 3.3

<210> 1

<211> 25

<212> DNA

<213> 人工序列

<400> 1

agcttaaggc ccggtgcccc gttct 25

<210> 2

<211> 25

<212> DNA

<213> 人工序列

<400> 2

ggtagggtag ggaatagtaa agtaa 25

<210> 3

<211> 19

<212> DNA

<213> 人工序列

<400> 3

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<210> 4

<211> 25

<212> DNA

<213> 人工序列

<400> 4

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