本發(fā)明涉及一種米糠抗氧化活性肽的分離制備方法。

背景技術(shù)：

米糠是大米生產(chǎn)工廠中產(chǎn)生較多的副產(chǎn)物，其蛋白質(zhì)氨基酸組成與大米中蛋白質(zhì)氨基酸組成相似，氨基酸組成合理，均為優(yōu)質(zhì)蛋白。我國每年工業(yè)生產(chǎn)都會產(chǎn)生大量的米糠，而其中大部分未得到有效利用，因此需要對米糠蛋白進行深加工以提高其附加值，實現(xiàn)資源充分利用。大米以及米糠中的蛋白溶解性差，嚴重影響其應(yīng)用。而米糠中的分子量較小的肽段則具有較好的溶解性，且不同的肽段具有不同的功效，如抗氧化性、降血壓、免疫活性等。大米抗氧化活性肽具有良好的自由基清除能力，在預(yù)防自由基誘發(fā)的心腦血管疾病方面有很大的開發(fā)潛力。大米活性肽對氧化損傷誘導(dǎo)的自由基有很好的清除作用，可提高人體細胞抗氧化能力。

經(jīng)過調(diào)研，未見我國學(xué)者利用中性蛋白酶提取米糠谷蛋白中抗氧化活性肽的相關(guān)文獻報道，因此中性蛋白酶提取米糠谷蛋白中抗氧化活性肽等研究領(lǐng)域尚處于空白階段。本研究發(fā)現(xiàn)利用中性蛋白酶提取米糠蛋白中的大米活性肽具有清除自由基、抑制細胞氧化的作用，有效提高米糠的附加價值，實現(xiàn)米糠的高值化利用。

技術(shù)實現(xiàn)要素：

本發(fā)明的目的在于提供一種米糠抗氧化活性肽的分離制備方法，是以米糠為原料，利用中性蛋白酶制備具有抗氧化活性的肽產(chǎn)品，以實現(xiàn)米糠的高值化利用。

為了達到上述目的，本發(fā)明提供的技術(shù)方案為：

所述米糠抗氧化活性肽的分離制備方法是通過堿提酸沉法和Osborne分級提取脫脂米糠來獲得米糠谷蛋白，然后選用離子交換和凝膠層析技術(shù)對米糠谷蛋白進行分離純化，再將分離純化后的米糠谷蛋白用堿性蛋白酶水解、離心、真空濃縮、冷凍干燥，之后利用離子交換層析、凝膠層析、制備RP-HPLC及分析型RP-HPLC分離純化得到抗氧化活性肽，所述抗氧化活性肽的序列如SEQ ID NO.1所示。

優(yōu)選地，所述堿性蛋白酶水解的條件為[E]/[S]1.5％—1.8％、pH值為10.0、溫度為50℃、反應(yīng)時間為4.2h。

優(yōu)選地，所述方法具體包括如下步驟：

(1)谷蛋白的提取：脫脂米糠→加水并調(diào)pH值為9.0，料液比為1:10，所述料液比的單位為mL/g，40℃水浴4h→離心→取上清液→pH值為4.0條件下酸沉→離心→取沉淀→水洗，調(diào)pH值為7.0→冷凍干燥→堿提米糠谷蛋白→Osborne分級提取，得到米糠谷蛋白；

(2)選用pH值為10.0，濃度為0.1mol/L的Na₂CO₃-NaHCO₃作為緩沖液對大米谷蛋白進行初步的分離；以pH值12.0，濃度為0.05mol/L Na₂HPO₄-NaOH緩沖液溶解堿提米糠谷蛋白，利用DEAE-52陰離子交換層析介質(zhì)對堿提米糠谷蛋白進行進一步分離純化；

(3)制備米糠蛋白懸浮液，按堿性蛋白酶/谷蛋白質(zhì)量比為1.5％-1.8％的比例添加堿性蛋白酶→調(diào)pH值為10.0→50℃下超級恒溫水浴酶反應(yīng)器中溶解30min→酶解4.2h→滅酶→離心→取上清液→真空濃縮→冷凍干燥，得大米谷蛋白肽；

(4)對大米谷蛋白肽進行分離純化后得抗氧化活性肽。

下面對本發(fā)明作進一步說明：

本發(fā)明所述大米活性肽的制備方法包括以下步驟：

(1)谷蛋白的提?。和ㄟ^堿提酸沉法提取谷蛋白，選用離子交換和凝膠層析技術(shù)對大米谷蛋白進行分離純化；

(2)米糠谷蛋白的水解：5％(w/v，g/mL)米糠谷蛋白懸浮液→調(diào)pH值→一定溫度下超級恒溫水浴酶反應(yīng)器中溶解30min→按一定的底物濃度、加酶量、pH值、溫度進行酶解(恒pH滴定儀使體系pH穩(wěn)定)→85℃，10min滅酶→3500r/min離心15min→上清液→真空濃縮→冷凍干燥→米糠谷蛋白肽；

(3)米糠谷蛋白肽的分離純化

①利用SP-Sephadex G-25作為離子交換層析介質(zhì)，pH4.0，0.02mol/L HAc-Na Ac為起始緩沖液，流速2mL/min，用平衡緩沖液、含0.5mol/L NaCl的平衡緩沖液和含1mol/L NaCl的平衡緩沖液梯度洗脫，選取米糠谷蛋白水解產(chǎn)物多個肽組分中自由基清除能力最強的組分。

②利用Sephadex G-15凝膠層析將①所選組分分離成幾個組分，選取自由基清除能力最強的組分。

③利用制備RP-HPLC將上個步驟所選組分進一步分離，選取幾個主要組分，通過測定各主要組分的自由基清除能力篩選出抗氧化活性較強的組分，再經(jīng)RP-HPLC分析是否為相對單一峰。

(4)采用MALDI-TOF/TOF MS質(zhì)譜分析法測得提取出的大米活性肽的相對分子量。結(jié)合TOF-MS/MS串聯(lián)質(zhì)譜得出其氨基酸組成和其排列順序。

與現(xiàn)有技術(shù)相比，本發(fā)明方法制備的米糠活性肽更有效的利用了米糠，提高了大米生產(chǎn)中副產(chǎn)物的利用，也節(jié)約了生產(chǎn)成本，對實現(xiàn)米糠蛋白的綜合利用和提高其附加值具有重要的意義。

附圖說明

圖1為TOF-MS/MS串聯(lián)質(zhì)譜測定結(jié)果圖；

圖2為離子交換層析分離得到的組分PA-PG的ABTS·⁺自由基清除能力；**表示清除率最高的組分和其他組分之間存在顯著性差異；

圖3為凝膠層析分離得到的組分PF₁-PF₄的ABTS·⁺自由基清除能力；**表示清除率最高的組分和其他組分之間存在顯著性差異；

圖4為RP-HPLC分離得到的組分PF₃-α到F₃-γ的ABTS·⁺自由基清除能力；**表示清除率最高的組分和其他組分之間存在顯著性差異。

具體實施方式

實施例1

所述米糠抗氧化活性肽的分離制備方法包括如下步驟：

(1)堿提酸沉法提取米糠谷蛋白的工藝流程為：脫脂米糠(過60目篩)→加水并調(diào)pH9.0(料液比1:10，所述料液比的單位為mL/g，水浴：40℃，4h)→離心(8000r/min，15min)→取上清液→酸沉(pH 4.0)→離心(8000r/min，15min)→取沉淀→水洗三次，調(diào)ph7.0→冷凍干燥(48h)→堿提米糠谷蛋白(4℃密封儲藏+硅膠)→Osborne分級提取，得到較純的谷蛋白；

(2)選用Na₂CO₃-NaHCO₃(pH10.0，0.1mol/L)作為緩沖液對大米谷蛋白進行初步的分離。以0.05mol/L Na₂HPO₄-NaOH(pH12.0)緩沖液溶解堿提米糠谷蛋白，利用DEAE-52陰離子交換層析介質(zhì)對堿提米糠谷蛋白進行了進一步分離純化，依次用0.15mol/L、0.25mol/L、0.35mol/L、0.45mol/L、0.55mol/L的含鹽緩沖液階段洗脫堿提大米谷蛋白，分離得到五個洗脫峰R₁、R₂、R₃、R₄、R₅，采用HPLC對R₃組分進行純度分析，其純度為71.55％。收集R₃采用Sephadex G-75凝膠過濾層析進一步純化，得到R₃-α、R₃-β、R₃-γ三個洗脫峰，經(jīng)HPLC檢測，其中R₃-γ洗脫峰的分子量為37530.34，純度達93.45％；

(3)5％(w/v，g/mL)米糠谷蛋白懸浮液，按照堿性蛋白酶/谷蛋白為1.5％-1.8％(g/g)的比例添加堿性蛋白酶→調(diào)pH值為10.0→50℃下超級恒溫水浴酶反應(yīng)器中溶解30min→酶解4.2h(用pH滴定儀使體系pH穩(wěn)定)→85℃，10min滅酶→3,500r/min離心15min→上清液→真空濃縮→冷凍干燥→大米谷蛋白肽；

(4)大米谷蛋白肽的分離純化

①利用SP-Sephadex C-25作為離子交換層析介質(zhì)，pH4.0，0.02mol/L HAc-NaAc為起始緩沖液，流速2m L/min，用平衡緩沖液、含0.5mol/L NaCl的平衡緩沖液和含1mol/L NaCl的平衡緩沖液梯度洗脫，谷蛋白中性蛋白酶水解產(chǎn)物混合肽組分被分離出七個組分(PA-PG)，組分PF的ABTS·⁺自由基清除能力最強(71.09％，圖2)。

②利用Sephadex G-15凝膠層析以超純水為緩沖液，進樣濃度為15mg/mL又將組分PF分成了4個組分PF₁、PF₂、PF₃和PF₄。檢測發(fā)現(xiàn)，組分PF₃的ABTS·⁺自由基清除能力最強，達到69.24％(圖3)。

③利用制備RP-HPLC將PF₃進一步分成了5個主要組分，通過測定各組分的自由基清除能力篩選出抗氧化活性最強的組分為PF₃-γ(圖4)，其ABTS·⁺自由基清除能力達到78.59％，經(jīng)RP-HPLC分析為相對單一峰。

(5)采用MALDI-TOF MS質(zhì)譜分析法測得抗氧化活性肽PF₃-γ的相對分子量為1002.06(圖1)。

結(jié)合TOF-MS/MS串聯(lián)質(zhì)譜得出；PF_3-γ由8個氨基酸組成，其排列順序為Lys-His-Asn-Arg-Gly-Asp-Glu-Phe(KHNRGDEF)。經(jīng)查新發(fā)現(xiàn)，本發(fā)明得到的活性肽為具有抗氧化活性的新的活性肽序列。

實施例2米谷蛋白活性肽體內(nèi)抗氧化活性的檢測

選擇對數(shù)生長期的細胞，用無EDTA胰酶消化后制成細胞懸液，用計數(shù)板測定懸液中的細胞濃度，按照每孔5000個細胞接種于96孔板，每孔接種100μL，每組設(shè)6個復(fù)孔，在37℃5％CO₂培養(yǎng)箱中培養(yǎng)6小時后分為正常組、H₂O₂處理組、H₂O₂+米谷蛋白活性肽保護組，將原有培養(yǎng)基吸出，所有組先加入80μL的培養(yǎng)基，正常組、H₂O₂處理組加入10μL的無血清培養(yǎng)基，H₂O₂+米谷蛋白活性肽保護組分別加入相應(yīng)濃度等體積米谷蛋白活性肽，使藥物終濃度分別為100、150、200μmol/L，于37℃5％CO₂培養(yǎng)箱預(yù)保護4h后，H₂O₂處理組和H₂O₂+米谷蛋白活性肽保護組每孔加入10μL H₂O₂，其終濃度為100μml/L，正常對照組加入10μL無血清培養(yǎng)基，于37℃5％CO₂培養(yǎng)箱孵育24h后，MTS法檢測細胞活力(見表1)。與正常組比較，H₂O₂損傷組的細胞存活率顯著下降；而與H₂O₂處理組比較，米谷蛋白活性肽的高劑量組(200μmol/L)對H₂O₂誘導(dǎo)的細胞活力有明顯改善。

表1米谷蛋白活性肽對H₂O₂損傷的內(nèi)皮祖細胞的細胞活力的影響