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檢測(cè)林可霉素的磁顆粒化學(xué)發(fā)光試劑盒及其應(yīng)用的制作方法

文檔序號(hào):6101580閱讀:572來(lái)源:國(guó)知局
專利名稱:檢測(cè)林可霉素的磁顆?;瘜W(xué)發(fā)光試劑盒及其應(yīng)用的制作方法
技術(shù)領(lǐng)域
本發(fā)明涉及一種直接化學(xué)發(fā)光檢測(cè)試劑盒及其檢測(cè)方法。特別是檢測(cè)動(dòng)物組織、 腎臟、牛奶、雞蛋、蜂蜜等樣本中林可霉素藥物殘留的磁顆粒競(jìng)爭(zhēng)直接化學(xué)發(fā)光檢測(cè)試劑盒。技術(shù)背景
林可霉素(Lincomycin,LIN)是由鏈霉菌 Stretomyces Iincolnensis 產(chǎn)生的一類堿性抗生素,對(duì)大多數(shù)革蘭氏陽(yáng)性菌以及某些厭氧的革蘭氏陰性菌有效,可致轉(zhuǎn)氨酶升高及黃疸,可引起過(guò)敏反應(yīng),可引起低血壓或心臟驟停,可引起耳鳴、眩暈等反應(yīng)。大環(huán)內(nèi)酯類是一類具有14元或16元碳內(nèi)酯環(huán)共同化學(xué)結(jié)構(gòu)的抗菌藥,主要作用域需氧革蘭氏陽(yáng)性菌和陰性菌、厭氧菌,以及軍團(tuán)菌、胎兒彎曲菌、衣原體和支原體等。大環(huán)內(nèi)酯類及其代謝產(chǎn)物在動(dòng)物的組織及器官內(nèi)蓄積達(dá)到一定的濃度后,可造成前庭和耳蝸神經(jīng)的損害,導(dǎo)致眩暈和聽(tīng)力減退,嚴(yán)重者會(huì)造成肝腎的損害。
目前,常用的檢測(cè)林可霉素殘留量的方法有高效液相色譜法(HPLC)、液相色譜-質(zhì)譜法(LC-MS)和酶聯(lián)免疫吸附法(ELISA)等方法。
I、高效液相色譜法(HPLC)具有檢測(cè)精度高、假陽(yáng)性率低的特點(diǎn)。HPLC法的主要缺點(diǎn)是儀器價(jià)格昂貴,操作比較繁瑣,耗時(shí)長(zhǎng),檢測(cè)費(fèi)用昂貴,對(duì)檢測(cè)人員專業(yè)要求較高,樣本前處理較復(fù)雜。
2、液相色譜-質(zhì)譜法(LC-MS),樣品不需要衍生化處理,可對(duì)尿液、血液、肝臟、毛發(fā)和眼球樣品進(jìn)行檢測(cè)。LC-MS/MS聯(lián)用,可進(jìn)一步提高信噪比,所以可用于對(duì)陽(yáng)性結(jié)果的確認(rèn)手段。但是,無(wú)論LC-MS還是LC-MS/MS,儀器檢測(cè)法未能解決儀器造價(jià)昂貴,操作步驟繁瑣,樣本前處理復(fù)雜,對(duì)操作人員專業(yè)素養(yǎng)要求高等問(wèn)題。
3、酶聯(lián)免疫法(ELISA)是20世紀(jì)70年代出現(xiàn),用于微量物質(zhì)的檢測(cè),最早應(yīng)用于傳染病、腫瘤標(biāo)志物、激素水平等臨床檢測(cè),90年代開(kāi)始在我國(guó)食品安全檢測(cè)領(lǐng)域推廣應(yīng)用,目前依托ELISA技術(shù)的試劑盒、試紙條已經(jīng)成為食品安全快速檢測(cè)領(lǐng)域的主導(dǎo)產(chǎn)品,同時(shí)也是我公司研發(fā)和銷售的主要產(chǎn)品類型。酶聯(lián)免疫檢測(cè)法基于抗原-抗體的特異性反應(yīng),檢測(cè)靈敏度較高、特異性較好,技術(shù)操作簡(jiǎn)易,容易掌握,確實(shí)解決了大量的以前難以解決的許多微量小分子物質(zhì)如抗生素、激素、農(nóng)藥殘留等的定性、定量分析工作,對(duì)食品安全快速檢測(cè)技術(shù)的發(fā)展起到了積極的促進(jìn)作用。但是,ELISA方法存在許多自身無(wú)法克服的缺陷,主要表現(xiàn)在
I)非均相反應(yīng)檢測(cè)過(guò)程中為分離游離物與結(jié)合物,需要多步洗板過(guò)程,耗時(shí)費(fèi)力,難以提高操作的自動(dòng)化程度。
2)酶催化反應(yīng)借助酶催化底物顯色,測(cè)定反應(yīng)液吸光度值。反應(yīng)的時(shí)間與溫度對(duì)酶活力存在較大影響,試劑穩(wěn)定性差。發(fā)明內(nèi)容3
本發(fā)明所要解決的技術(shù)問(wèn)題在于提供一種檢測(cè)林可霉素的化學(xué)發(fā)光試劑盒,采用該試劑盒進(jìn)行林可霉素的檢測(cè)時(shí)不僅具備較高的靈敏度,特異性,而且具有較高的反應(yīng)速度。本發(fā)明的另一個(gè)目的在于提供一種林可霉素的測(cè)試方法,該方法操作簡(jiǎn)單,靈敏度高,特異性好。實(shí)現(xiàn)上述目的,本發(fā)明提供一種林可霉素檢測(cè)試劑盒,其包含的主要試劑有發(fā)光標(biāo)記物、突光素標(biāo)記物、標(biāo)準(zhǔn)品、質(zhì)控品、分離試劑。所述的分離試劑是包被有羊抗FITC抗體的順磁性納米微珠。所述的順磁性納米微珠,表面含有-OH、-COOH或-NH2活性基團(tuán)的微珠,用于包被羊抗FITC單克隆抗體,其內(nèi)芯是Fe3O4或Y -Fe2O3,使得微珠具有順磁性。
所述的發(fā)光標(biāo)記物是異魯米諾衍生物標(biāo)記的林可霉素半抗原。所述的異魯米諾衍生物是 ABEI、AHEI 或 ABEN。所述的試劑盒還包括標(biāo)準(zhǔn)品,質(zhì)控品和濃縮洗液。所述的熒光素標(biāo)記物是FITC標(biāo)記林可霉素單克隆抗體。本發(fā)明還提供一種利用試劑盒檢測(cè)林可霉素的方法,包括下列步驟I)分別吸取20 μ 1-100 μ I標(biāo)準(zhǔn)品或樣本,然后加入20 μ 1-100 μ I發(fā)光標(biāo)記物,再加20 μ 1-100 μ I突光素標(biāo)記物,充分混勻后,37°C溫育15min ;2)加入包被有羊抗FITC單克隆抗體的順磁性納米微珠80-150 μ 1,混勻后在37°C溫育5min ;3)用磁分離架分離5min,棄上清后用清洗液300-500 μ I沖洗復(fù)合物沉淀;4)上述清洗步驟重復(fù)2-4次;5)所得分離好的復(fù)合物直接放入測(cè)量暗箱,加入激發(fā)底物I和激發(fā)底物2,延遲
3-5s后檢測(cè)發(fā)出的相對(duì)光強(qiáng)度(RLU),樣本中的含量與RLU成一定比例關(guān)系,可以通過(guò)RLU集合標(biāo)準(zhǔn)曲線法計(jì)算林可霉素的濃度。所述的發(fā)光底物的主要成分是NaOH和Η202。本發(fā)明中分析測(cè)試方法所用的分析儀是包括電源電路、自動(dòng)注射泵I和2、測(cè)量室、發(fā)光室、光電倍增管計(jì)數(shù)器和輸出系統(tǒng),同時(shí)還配置有計(jì)算機(jī)與中文界面的Windows控制軟件,可進(jìn)行資料錄入、結(jié)果匯總、質(zhì)量控制、結(jié)果儲(chǔ)存和結(jié)果查詢等功能,可完成多種分析模式的編程,定量或定性報(bào)告結(jié)果,自動(dòng)生成并儲(chǔ)存、更新功能,兩點(diǎn)自動(dòng)修正標(biāo)準(zhǔn)曲線,所采用的系統(tǒng)是CI-2008系統(tǒng)。本發(fā)明所述的分離試劑是包被羊抗FITC單克隆抗體,其表面基團(tuán)的含量是O. l-o. 3eqm/g,其保存于含有 1-3% BSA,O. 01-0. 1% Tween-20,0. 02% NaN3, pH7. 2-7. 6 的tris緩沖液中。所述的FITC是異硫氰酸熒光素。所述百分含量為質(zhì)量百分含量。所述的發(fā)光標(biāo)記物是異魯米諾衍生物ABEI、AHEI或ABEN標(biāo)記的林可霉素半抗原,其保存于含pH7. 2-7. 6,0. 1-0. 3% Tween-20,0. 01% NaN3的tris緩沖液中。所述百分含量是質(zhì)量百分含量。所述的熒光素標(biāo)記物是FITC標(biāo)記的林可霉素單克隆抗體,其保存于PH7. 2,含
4-7%BSA,O. 03% NaN3的tris緩沖液。所述百分含量為質(zhì)量百分含量。林可霉素標(biāo)準(zhǔn)品溶液(Ong/ml,O. 025ng/ml, O. 075ng/ml, O. 225ng/ml, O. 675ng/CN 102928409 A書明說(shuō)3/7頁(yè)ml, 2. Ong/ml),標(biāo)準(zhǔn)品稀釋液為ρΗ7· 2,0. 02% NaN3,0. 05mol/L tris緩沖液。所述百分含量為質(zhì)量百分含量。
林可霉素質(zhì)控品溶液濃度分別為O. 05ng/ml, I. 5ng/ml,質(zhì)控品稀釋液ρΗ7· 2, O. 02% NaN3,0. 05mol/L tris緩沖液。所述百分含量為質(zhì)量百分含量。
所述的濃縮洗液為ρΗ7· 4,0. 2% Tween-20,0. 02% NaN3,0. 05mol/L tris 緩沖液。 所述百分含量為質(zhì)量百分含量。
本發(fā)明的有益效果如下
1)本發(fā)明試劑盒可特異性檢測(cè)林可霉素藥物,對(duì)其他藥物無(wú)交叉反應(yīng)。
2)本發(fā)明試劑盒的靈敏度較高,對(duì)林可霉素的檢測(cè)靈敏度可達(dá)O. Olng/ml。
3)本發(fā)明試劑盒的檢測(cè)快捷,檢測(cè)時(shí)間低于20min。
具體實(shí)施方式
實(shí)施例一試劑盒具體組分的制備
I)林可霉素半抗原的合成
將林可霉素通過(guò)琥珀酸酐法合成具有羧基的林可霉素半抗原。
2)林可霉素人工抗原的制備
將林可霉素半抗原與牛血清白蛋白(BSA)采用混合酸酐法進(jìn)行偶聯(lián)得到免疫原。
3)單克隆抗體的制備
動(dòng)物免疫以免疫原對(duì)Balb/c小鼠進(jìn)行免疫,免疫劑量為100 μ g/只,使其產(chǎn)生抗血清。
細(xì)胞融合和克隆化取免疫Balb/c小鼠脾細(xì)胞,按9 I比例與SP2/0骨髓瘤細(xì)胞融合,得到單克隆抗體的雜交瘤細(xì)胞株。
細(xì)胞凍存和復(fù)蘇將雜交瘤細(xì)胞用凍存液制成IX IO9個(gè)/ml的細(xì)胞懸液,在液氮中長(zhǎng)期保存。復(fù)蘇時(shí)取出凍存管,立即放入37°C水浴中速融,離心去除凍存液后,移入培養(yǎng)瓶?jī)?nèi)培養(yǎng)。
單克隆抗體的制備與純化將Balb/c小鼠腹腔注入滅菌石蠟油O. 5ml/只,7天后腹腔注射雜交瘤細(xì)胞5X IO7個(gè)/只,7天后采集腹水。用辛酸_飽和硫酸銨法進(jìn)行純化,得到單克隆抗體。
4)發(fā)光標(biāo)記物的制備
取4. 5mmol/L ABEI,溶于4ml蒸懼水中,5. Ommol/L N-輕基琥拍酰亞胺溶于O. 5ml N,N-二甲基甲酰胺中,二者充分混勻后室溫反應(yīng)3-4h。取上述制備的林可霉素半抗原 15mg,用pH7. 4PBS調(diào)節(jié)體積到I. 5ml,然后加入上述活化的ABEI溶液,充分混勻后室溫反應(yīng)過(guò)夜,過(guò)G-25凝膠柱純化。
5)熒光標(biāo)記物制備
用O. 025mol/L, pH9. O的碳酸鹽緩沖液將林可霉素單克隆抗體稀釋成I. O %質(zhì)量百分比濃度;根據(jù)欲標(biāo)記的蛋白質(zhì)總量,按每毫克免疫球蛋白加O. Olmg FITC,用分析天平準(zhǔn)確稱取所需的FITC粉末。用同一緩沖液將FITC配成O. lmg/ml的溶液,按上述抗體溶液體積的3-5倍,混入FITC稀釋液;在4 。C避光條件下電磁攪拌、標(biāo)記30-48h ;將標(biāo)記溶液 3000r/min,室溫離心20min,除去其中少量的沉淀物,裝入透析袋中,再pH7. 4的PBS緩沖液5透析2-3天,期間至少更換透析液3次;取透析過(guò)夜的標(biāo)記物,通過(guò)SephadexG-25或G_50柱,分離游離熒光素,收集標(biāo)記的熒光標(biāo)記物進(jìn)行鑒定,分裝,貯存于4°C冰箱中。6)分離試劑制備a)磁珠活化表面-COOH基團(tuán)的磁珠(購(gòu)于DYNAL,粒徑為2. 8 μ m),其含量是O. 15eq/g;取100 μ I 磁珠,用 100 μ I 25mmol/ L, pH5. 0,0. 05% Tween_20MES 溶液洗漆兩次,磁分離后移除上清;使用前,用4°C貯存的25mmol/L MES溶液分別配置50mmol/L的EDC、NHS溶液;分別加入50 μ I新配置的EDC和NHS溶液到裝有磁珠的離心管中,渦旋混勻,室溫活化30min ;離心管置于磁分離架上磁分離4min,移除上清,加入100 μ I, 25mmol/L,pH5. O,MES清洗2_3次后即可得表面羧基活化的磁珠。b)磁珠偶聯(lián)羊抗FITC單克隆抗體將50-100 μ g羊抗FITC單克隆抗體溶解到60 μ 1,25mmol/L,pH5. OMES中,用所述MES溶液調(diào)節(jié)總體積至100 μ 1,輕柔混勻磁珠與抗體;室溫條件下至少偶聯(lián)30min或4V偶聯(lián)2h,該期間可利用渦旋儀使磁珠保持混勻狀態(tài);離心管置于磁分離架上磁分離3-5min,移除上清;為了淬滅未反應(yīng)的-C00H,可加入100 μ 1,ρΗ7. 4,tris緩沖液反應(yīng)15min或100 μ 1,ρΗ8· 0,含有 50mmol/L 乙醇胺的 PBS 封閉磁珠;用 100 μ 1,0. 1-0. 3% BSA, O. 1%Tween-20的PBS或TRIS清洗封閉好的磁珠3_5次;最后將磁珠復(fù)溶于含O. 1-0. 5% BSA,O. 01-0. 1% Tween-20,0. 02% NaN3 的 PBS 或 tris 緩沖液中,2_8°C保藏。實(shí)施例二試劑盒的組建組建檢測(cè)林可霉素的磁顆?;瘜W(xué)發(fā)光試劑盒,使其含有下列組分FITC標(biāo)記的林可霉素單克隆抗體的熒光標(biāo)記物ABEI標(biāo)記的林可霉素半抗原的發(fā)光標(biāo)記物表面包被羊抗FITC單克隆抗體的順磁性納米微珠的分離試劑林可霉素標(biāo)準(zhǔn)品溶液(Ong/ml,O. 025ng/ml, O. 075ng/ml, O. 225ng/ml, O. 675ng/ml, 2. Ong/ml),標(biāo)準(zhǔn)品稀釋液為ρΗ7· 2,0. 02% NaN3,0. 05mol/L tris緩沖液。所述百分含量為質(zhì)量百分含量。林可霉素質(zhì)控品溶液濃度分別為O. 05ng/ml, I. 5ng/ml,質(zhì)控品稀釋液ρΗ7· 2,O. 02% NaN3,0. 05mol/L tris緩沖液。所述百分含量為質(zhì)量百分含量。濃縮洗液為pH7. 4,0. 2% Tween-20,0. 02% NaN3,0. 05mol/L tris 緩沖液。所述百分含量為質(zhì)量百分含量。實(shí)施例三實(shí)際樣品中林可霉素的檢測(cè)I、樣本前處理(一 )組織(肌肉、肝臟)、水產(chǎn)前處理方法用均質(zhì)器均質(zhì)組織樣本;稱取2. 0±0. 05g均質(zhì)物至50ml聚苯乙烯離心管中,加入IOml甲醇-O. 015M鹽酸溶液,用振蕩器振蕩5min ;3000g以上,室溫(20_25°C )離心5min ;移取200 μ I上清液,加入600 μ I復(fù)溶工作液充分混勻;取50 μ I用于分析,樣本稀釋倍數(shù)20。( 二)蜂蜜前處理方法稱取1.0±0. 05g蜂蜜至4ml聚苯乙烯離心管中,加入Iml去離子水,用渦旋儀渦動(dòng)至蜂蜜全部溶解,再使用振蕩器振蕩5min ;取上層清液100μ I至2ml聚苯乙烯離心管中,加入500 μ I復(fù)溶工作液用渦旋儀渦動(dòng)30s ;取50μ I用于分析,樣本稀釋倍數(shù)6。
(三)蜂王漿的前處理方法
稱取I. 0±0. 05g蜂王漿至50ml聚苯乙烯離心管中,加入5ml去離子水,用渦旋儀渦動(dòng)至蜂王漿全部溶解;3000g以上,室溫(20-25°C )離心5min ;取上層清液200 μ I至2ml 聚苯乙烯離心管中,加入600 μ I復(fù)溶工作液用渦旋儀渦動(dòng)30s ;取50 μ I用于分析,樣本稀釋倍數(shù)20。
2、用試劑盒檢測(cè)與結(jié)果分析
分別吸取20 μ 1-100 μ I標(biāo)準(zhǔn)品或樣本,然后加入20 μ 1-100 μ I發(fā)光標(biāo)記物,再加 20 μ 1-100 μ I熒光素標(biāo)記物,充分混勻后,37°C溫育15min ;加入包被有羊抗FITC單克隆抗體的順磁性納米微珠80-150 μ I,混勻后在37°C溫育5min ;用磁分離架分離5min,棄上清后用清洗液300-500 μ I沖洗復(fù)合物沉淀;所得分離好的復(fù)合物直接放入測(cè)量暗箱,加入激發(fā)底物I和激發(fā)底物2,延遲3-5s后檢測(cè)發(fā)出的相對(duì)光強(qiáng)度(RLU),樣本中林可霉素的含量與 RLU成一定比例關(guān)系,可以通過(guò)RLU結(jié)合標(biāo)準(zhǔn)曲線法計(jì)算林可霉素的濃度。
激發(fā)底物I是NaOH,激發(fā)底物2是H2O2。底物裝載前,用蒸餾水清洗底物泵10_20 遍,排空管道內(nèi)殘存的水跡后,再將相應(yīng)的底物直接放入儀器內(nèi),將泵管插入底物瓶中;用底物沖洗管道5次,并測(cè)定底物的RLU值,正常情況下,底物的RLU值不應(yīng)超過(guò)1200。若超過(guò)1200,需重新用蒸餾水對(duì)管道和底物泵進(jìn)行更多次清洗,直至空白值降至合理范圍內(nèi)。若超過(guò)三天不做實(shí)驗(yàn),需卸載底物瓶,并蓋上蓋子,以防蒸發(fā)。隨后用蒸餾水清洗管道,并排空,以免強(qiáng)堿溶液腐蝕底物泵。
本發(fā)明米用6 個(gè)林可霉素標(biāo)準(zhǔn)品(Ong/ml,O. 025ng/ml,O. 075ng/ml,O. 225ng/ml, 0. 675ng/ml,2. Ong/ml)進(jìn)行曲線測(cè)繪。儀器根據(jù)所述方法檢測(cè)得到一條RLU值與林可霉素濃度相關(guān)的定標(biāo)曲線,此后測(cè)量中,每一個(gè)樣本中的林可霉素濃度與標(biāo)準(zhǔn)曲線相比較得出樣本中的林可霉素含量。
實(shí)施例四試劑盒質(zhì)量的測(cè)定
I、試劑盒的靈敏度
試劑盒靈敏度的定義為測(cè)定20次零標(biāo)準(zhǔn)品,測(cè)定的平均值加上3倍標(biāo)準(zhǔn)差。該試劑盒的靈敏度為0. 025ng/ml。
2、樣本的準(zhǔn)確度和精密度
準(zhǔn)確度是指測(cè)定值與真值間的符合程度,試劑盒準(zhǔn)確度常用回收率表示。精密度又稱可重復(fù)性,常用變異系數(shù)表示。
按照實(shí)施例三的樣本提取方法,以I. 0ng/g(ml)、2. 0ng/g(ml)兩個(gè)濃度的林可霉素分別對(duì)雞肉、蝦、蜂王漿樣本進(jìn)行添加,以0. 3ng/g、0. 6ng/g兩個(gè)濃度的林可霉素對(duì)蜂蜜樣本進(jìn)行添加回收,每種樣本每個(gè)濃度各4個(gè)平行,用三批試劑盒進(jìn)行測(cè)定,計(jì)算樣本的平均回收率及精密度。實(shí)驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)下表。
表I準(zhǔn)確度和精密度測(cè)定ng/g (ml)
權(quán)利要求
1.一種檢測(cè)林可霉素的磁顆?;瘜W(xué)發(fā)光試劑盒,包括的試劑有發(fā)光標(biāo)記物、熒光素標(biāo)記物、標(biāo)準(zhǔn)品、質(zhì)控品、分離試劑。
2.根據(jù)權(quán)利要求I所述的試劑盒,其特征在于所述的分離試劑是包被有羊抗FITC單克隆抗體的順磁性納米微珠。
3.根據(jù)權(quán)利要求2所述的試劑盒,其特征在于所述的順磁性納米微珠是里面包覆有 Fe3O4或Y -Fe2O3,表面含有_0H、-COOH或-NH2活性基團(tuán)的微珠。
4.根據(jù)權(quán)利要求1-3任一項(xiàng)所述的試劑盒,其特征在于所述的發(fā)光標(biāo)記物是異魯米諾衍生物標(biāo)記的林可霉素半抗原。
5.根據(jù)權(quán)利要求4所述的試劑盒,其特征在于所述的異魯米諾發(fā)光標(biāo)記物是ABEI、 AHEI 或 AffiN。
6.根據(jù)權(quán)利要求1-3任一項(xiàng)所述的試劑盒,其特征在于所述的試劑盒還包括標(biāo)準(zhǔn)液、 質(zhì)控品和濃縮洗液。
7.根據(jù)權(quán)利要求1-3之一所述的試劑盒,其特征在于所述的熒光素標(biāo)記物是FITC標(biāo)記的林可霉素單克隆抗體。
8.一種利用權(quán)利要求1-7任一項(xiàng)所述的試劑盒檢測(cè)林可霉素的方法,包括下列步驟1)分別吸取20μ 1-100 μ I標(biāo)準(zhǔn)品或樣本,然后加入20 μ 1-100 μ I發(fā)光標(biāo)記物,再加 20 μ 1-100 μ I突光素標(biāo)記物,充分混勻后,37°C溫育15min ;2)加入包被有羊抗FITC單克隆抗體的順磁性納米微珠80-150μ 1,混勻后在37°C溫育 5min ;3)用磁分離架分離5min,棄上清后用清洗液300-500μ I沖洗復(fù)合物沉淀;4)上述清洗步驟重復(fù)2-4次;5)4)所得分離好的復(fù)合物直接放入測(cè)量暗箱,加入激發(fā)底物I和激發(fā)底物2,延遲3-5s 后檢測(cè)發(fā)出的相對(duì)光強(qiáng)度(RLU),樣本中林可霉素的含量與RLU成一定比例關(guān)系,可以通過(guò) RLU集合標(biāo)準(zhǔn)曲線法計(jì)算林可霉素的濃度。
全文摘要
本發(fā)明涉及檢測(cè)林可霉素的磁顆粒化學(xué)發(fā)光試劑盒,包括的試劑有發(fā)光標(biāo)記物、熒光素標(biāo)記物、標(biāo)準(zhǔn)品、質(zhì)控品、分離試劑。發(fā)光標(biāo)記物是異魯米諾發(fā)光標(biāo)記物標(biāo)記的林可霉素半抗原,熒光標(biāo)記物是指熒光素或其衍生物標(biāo)記的林可霉素單克隆抗體,分離試劑是指包被有羊抗FITC單克隆抗體的順磁性納米微珠。本發(fā)明還涉及一種采用所述的試劑盒檢測(cè)動(dòng)物源性食品中林可霉素的方法,本方法對(duì)林可霉素檢測(cè)具備較高的靈敏度、特異性和較快的檢測(cè)速度。
文檔編號(hào)G01N21/76GK102928409SQ20111022692
公開(kāi)日2013年2月13日 申請(qǐng)日期2011年8月9日 優(yōu)先權(quán)日2011年8月9日
發(fā)明者馮才偉, 馮靜, 羅曉琴, 岳欣榮, 聶雯瑩, 張荃 申請(qǐng)人:北京勤邦生物技術(shù)有限公司
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